Изучение статуса активации тромбоцитов в зависимости от используемой при заготовке аппаратуры Medline.ru - медико-биологический информационный портал Медлайн.ру

Изучение статуса активации тромбоцитов в зависимости от используемой при заготовке аппаратуры

Касьянов А.Д.1, Гришина Г.В.1, Голованова И.С.1, Ким Е.В.1, Ласточкина Д.В.1,
Смирнова О.А.1, Матвиенко О.Ю.1, Бессмельцев С.С.1,2

1Федеральное государственное бюджетное учреждение «Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства»
191024, Россия, Санкт-Петербург, ул. 2-я Советская, 16
2Федеральное государственное бюджетное учреждение здравоохранения высшего образования «Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова» Министерства здравоохранения Российской Федерации
191015, Россия, Санкт-Петербург, ул. Кирочная, д. 41

Резюме
Образование микрочастиц (микровезикул) является неотъемлемым проявлением жизнедеятельности клеток и происходит как «in vivo», так и «in vitro». Среди всех микрочастиц, находящихся в крови, микрочастицы тромбоцитов (ТМЧ) являются наиболее многочисленными. ТМЧ могут представлять патофизиологическую угрозу или пользу для клеточной среды при взаимодействии с кровеносной системой. Также появляется все больше доказательств того, что выработка ТМЧ запускается во время донации, разделения на компоненты и хранения крови. Цель исследования. Изучение статуса активации концентратов тромбоцитов в зависимости от используемой при заготовке аппаратуры. Материалы и методы. Исследован статус активации по тромбоцитарным микрочастицам 56 аферезных концентратов тромбоцитов, заготовленных с использованием аппаратов для цитафереза Trima Accel (Terumo ВСТ, США) и MCS+ (Haemonetics Corporation, США) на сроках хранения. Результаты. Данные исследования свидетельствуют о значимом увеличении содержания тромбоцитарных микрочастиц к концу срока хранения, более выраженном при использовании сепаратора Trima Accel. Заключение. Оценка статуса активации тромбоцитов по уровню содержания микрочастиц позволит улучшить качество и эффективность проводимой трансфузионной терапии.

Ключевые слова
тромбоцитный концентрат, микрочастица, цитаферез, проточная цитометрия, цитофлуориметр

(статья в формате PDF. Для просмотра необходим Adobe Acrobat Reader)

открыть статью в

новом окне

Список литературы

1. Simak J., Gelderman M.P. Cell membrane microparticles in blood and blood products: potentially pathogenic agents and diagnostic markers. Transfusion Medicine Reviews. 2006; 20: 1-26.

2. Goubran H.A., Burnouf T., Stakiw J., Seghatchian J. Platelet microparticle: a sensitive physiological “fine tuning” balancing factor in health and disease. Transfusion and Apheresis Science. 2015; 52: 12-18.

3. Burnouf T., Chou M-L., Goubran H., et al. An overview of the role of microparticles/microvesicles in blood components: are they clinically beneficial or harmful? Transfusion and Apheresis Science. 2015; 53: 137-45.

4. Cognasse F., Hamzeh-Cognasse H., Laradi S. et al. The role of microparticles in inflammation and transfusion: a concise review. Transfusion and Apheresis Science. 2015; 53: 159-167.

5. Flaumenhaft R. Formation and fate of platelet microparticles. Blood Cells, Molecules, and Diseases. 2006; 36: 182-187.

6. Keuren J.F., Magdeleyns E.J., Govers-Riemslag J.W. et al. Effects of storage-induced platelet microparticles on the initiation and propagation phase of blood coagulation. British Journal of Haematology. 2006; 134: 307-313.

7. Nantakomol D., Imwong M., Mas-Oodi S. et al. Increase membrane vesiculation in essential hypertension. Laboratory Medicine. 2012; 43: 6-9.

8. Viera A.J., Mooberry M., Key N.S. Microparticles in cardiovascular disease pathophysiology and outcomes. Journal of the American Society of Hypertension. 2012; 6: 243-252.

9. Alijotas-Reig J., Palacio-Garcia C., Llurba E., Vilardell-Tarres M. Cellderived microparticles and vascular pregnancy complications: a systematic and comprehensive review. Fertility and Sterility. 2013; 99: 441-449.

10. Maslanka K., Uhrynowska M., Lopacz P. et al. Analysis of leucocyte antibodies, cytokines, lysophospholipids and cell microparticles in blood components implicated in post-transfusion reactions with dyspnoea. Vox Sanguinis. 2015; 108: 27-36.

11. Soop A., Hallstrom L., Frostell C. et al. Effect of lipopolysaccharide administration on the number, phenotype and content of nuclear molecules in blood microparticles of normal human subjects. Scandinavian Journal of Immunology. 2013; 78: 205-213.

12. Tripodi A., Branchi A., Chantarangkul V. et al. Hypercoagulability in patients with type 2 diabetes mellitus detected by a thrombin generation assay. Journal of Thrombosis and Thrombolysis. 2011; 31: 165-172.

13. Chamouard P., Desprez D., Hugel B. et al. Circulating cell-derived microparticles in Crohn’s disease. Digestive Diseases and Sciences. 2005; 50: 574-580.

14. Woei-A-Jin F.J., van der Starre W.E., Tesselaar M.E. et al. Procoagulant tissue factor activity on microparticles is associated with disease severity and bacteremia in febrile urinary tract infections. Thrombosis Research. 2014; 133: 799-803.

15. Woth G., Tokes-Fuzesi M., Magyarlaki T. et al. Activated platelet-derived microparticle numbers are elevated in patients with severe fungal (Candida albicans) sepsis. Annals of Clinical Biochemistry. 2012; 49: 554-560.

16. Pisetsky D., Ullal A.J., Gauley J., Ning T.C. Microparticles as mediators and biomarkers of rheumatic disease. Rheumatology. 2012; 51: 1737-1746.

17. Pelletier F., Garnache-Ottou .F, Angelot F. et al. Increased levels of circulating endothelial-derived microparticles and small-size platelet-derived microparticles in psoriasis. The Journal of Investigative Dermatology. 2011; 131: 1573-1576.

18. Duarte D., Taveira-Gomes T., Sokhatska O. et al. Increased circulating platelet microparticles as a potential biomarker in asthma. Allergy. 2013; 68: 1073-1075.

19. Laresche C., Pelletier F., Sokhatska O. et al. Increased levels of circulating microparticles are associated with increased procoagulant activity in patients with cutaneous malignant melanoma. The Journal of Investigative Dermatology. 2014; 134: 176-182.

20. Johnson L., Schubert P., Tan S. et al. Extended storage and glucose exhaustion are associated with apoptotic changes in platelets stored in additive solution. Transfusion. 2015; 56(2): 360-368.

21. Ayers L., Kohler M., Harrison P. et al. Measurement of circulating cell-derived microparticles by ﬂow cytometry: sources of variability within the assay. Thrombosis Research. 2011; 127(4): 370-377.

22. Christersson C., Johnell M., Siegbahn A. Evaluation of microparticles in whole blood by multicolour ﬂow cytometry assay. The Scandinavian Journal of Clinical and Laboratory Investigation. 2013; 73(3): 229-239.

23. Freyssinet J.M., Dignat-George F. More on: measuring circulating cell-derived microparticles. Journal of Thrombosis and Haemostasis. 2005; 3(3): 613-614.

24. Millar D., Murphy L., Labrie A., Maurer-Spurej E. Routine Screening Method for Microparticles in Platelet Transfusions. Journal of Visualized Experiments. 2018; 31(131): 56893.

25. Schiffer C.A., Anderson K. C., Bennett C. L. et al. Platelet transfusion for patients with cancer: clinical practice guidelines of the American Society of Clinical Oncology. Journal of Clinical Oncology. 2001; 19(5): 1519 - 1538.

26. Getz T.M., Montgomery R.K., Bynum J.A. et al. Storage of platelets at 4∘C in platelet additive solutions prevents aggregate formation and preserves platelet functional responses. Transfusion. 2016; 56(6): 1320 - 1328.