Измерение тромбоцитарных микрочастиц в контексте оценки безопасности концентратов тромбоцитов Medline.ru - медико-биологический информационный портал Медлайн.ру

Измерение тромбоцитарных микрочастиц в контексте оценки безопасности концентратов тромбоцитов

Ласточкина Д.В., Касьянов А.Д., Гришина Г.В., Голованова И.С., Смирнова О.А., Матвиенко О.Ю., Бессмельцев С.С.
Федеральное государственное бюджетное учреждение «Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства»,
Санкт-Петербург

Резюме
Трансфузионная терапия с использованием концентратов тромбоцитов (КТ) является важной клинической опцией в лечении пациентов гематологического, гинекологического, хирургического и онкологического профиля. В связи с возросшей потребностью применения данного компонента крови оценке его качества и безопасности уделяется повышенное внимание. Цель исследования. Анализ количественных изменений клеточного состава и тромбоцитарных микрочастиц в аферезном концентрате тромбоцитов на сроках хранения. Материалы и методы. Объектом исследования являлись аферезные концентраты тромбоцитов, заготовленные на плазме и добавочном растворе SSP+. Количество тромбоцитов на сроках хранения определяли с помощью гематологического анализатора Medonic М20 (Швеция). Количество тромбоцитарных микрочастиц регистрировали на проточном цитофлуориметре CytoFLEX (Beckman Coulter, США) путем бокового рассеяния излучения фиолетового лазера. Результаты. Выявлено, что количество тромбоцитов существенно не меняется в процессе хранения, тогда как уровень микрочастиц значимо увеличивался как в концентратах тромбоцитов, заготовленных на плазме, так и в концентратах тромбоцитов в добавочном растворе. Заключение. Возможность дифференцировки концентратов тромбоцитов по уровню активации будет способствовать безопасности проводимой трансфузионной терапии и рациональному использованию востребованного компонента крови.

Ключевые слова
концентрат тромбоцитов; микрочастицы; проточная цитометрия; светорассеяние; рефрактерность

(статья в формате PDF. Для просмотра необходим Adobe Acrobat Reader)

открыть статью в

новом окне

Список литературы

1. Sigle J.P., Medinger M., Stern M., Infanti L., Heim D., Halter J. et al. Prospective change control analysis of transfer of platelet concentrate production from a specialized stem cell transplantation unit to a blood transfusion center. Journal of Clinical Apheresis. 2012; 27: 178 - 182.

2. Labrie A., Marshall A., Bedi H., Maurer-Spurej E. Characterization of platelet concentrates using dynamic light scattering. Transfusion Medicine and Hemotherapy. 2013; 40(2): 93 - 100.

3. Maurer-Spurej E., Larsen R., Labrie A., Heaton A., Chipperfield K. Microparticle content of platelet concentrates is predicted by donor microparticles and is altered by production methods and stress. Transfusion and Apheresis Science. 2016; 55(1): 35-43.

4. Andaloussi E.L. S., Mager I., Breakefield X.O., Wood M.J. Extracellular vesicles: biology and emerging therapeutic opportunities. Nature Reviews Drug Discovery. 2013; 12(5): 347 - 357.

5. Viera A.J., Mooberry M., Key N.S. Microparticles in cardiovascular disease pathophysiology and out- comes. Journal of the American Society of Hypertension 2012; 6: 243 - 252.

6. Valeri C. R. Circulation and hemostatic effectiveness of platelets stored at 4 C or 22 C: studies in aspirin-treated normal Volunteers. Transfusion. 1976; 16(1): 20 - 23.

7. Becker G. A., Tuccelli M., Kunicki T., Chalos M. K., Aster R. H. Studies of platelet concentrates stored at 22 C and 4 C. Transfusion. 1973; 13(2): 61 - 68.

8. Schiffer C.A., Anderson K. C., Bennett C. L. Bernstein S., Elting L.S., Goldsmith M. et al. Platelet transfusion for patients with cancer: clinical practice guidelines of the American Society of Clinical Oncology. Journal of Clinical Oncology. 2001; 19(5): 1519 - 1538.

9. Getz T.M., Montgomery R.K., Bynum J.A., Aden J.K., Pidcoke H.F., Cap A.P. Storage of platelets at 4∘C in platelet additive solutions prevents aggregate formation and preserves platelet functional responses. Transfusion. 2016; 56(6): 1320 - 1328.

10. Obeid S, Ceroi A., Mourey G., Saas P., Elie-Caille C., BoireauW. Development of a NanoBioAnalytical platform for "on-chip" qualification and quantification of platelet-derived microparticles. Biosensors and Bioelectronics. 2017; 93: 250 - 259.

11. Anderson W., Kozak D., Coleman V.A., Jaemting A.K., Trau M. A comparative study of submicron particle sizing platforms: Accuracy, precision and resolution analysis of polydisperse particle size distributions. Journal of Colloid and Interface Science. 2013; 405: 322 - 330.

12. Gyoergy B, Szabo T.G., Turiak L., Wright M., Herczeg P., Ledeczi Z. et al. et al. Improved Flow Cytometric Assessment Reveals Distinct Microvesicle (Cell-Derived Microparticle) Signatures in Joint Diseases. PLOS One. 2012; 7(11): 49726.

13. Inglis H., Norris P., Danesh A. Techniques for the analysis of extracellular vesicles using flow cytometry. Journal of Visualized Experiments. 2015; 17(97): 52484.

14. Millar D., Murphy L., Labrie A., Maurer-Spurej E. Routine Screening Method for Microparticles in Platelet Transfusions. Journal of Visualized Experiments. 2018; 31(131): 56893.