![]() | |||
МЕДЛАЙН.РУ
|
|||
|
Фундаментальные исследования • Экспериментальная токсикология
Том: 24 Статья: « 25 » Страницы:. 348-359 Опубликована в журнале: 19 апреля 2023 г. English version ![]() Экспериментальное изучение эффективности ингаляционного применения атропина для коррекции дыхательных нарушений при отравлении фосфорорганическим соединениемИванов И.М., Субботина С.Н., Алхутова И.М., Колесников А.М., Рагузина Д.В.
ФГБУ «Государственный научно-исследовательский испытательный институт военной медицины» Министерства обороны Российской Федерации
Резюме
В работе проведено экспериментальное изучение эффективности ингаляционного применения атропина в качестве средства коррекции дыхательных нарушений, вызванных острым отравлением крыс фосфорорганическим соединением. Показано, что внутримышечное введение токсиканта в дозе ЛД16 вызывает значимые изменения функции внешнего дыхания крыс, проявляющиеся в снижении минутного объема дыхания, увлечении продолжительности вдоха и выдоха, увеличении экспираторных пауз, развитии бронхоконстрикции. Продолжительность токсических эффектов составляет 240-360 мин. Однократное интратрахеальное введение атропина в дозах 0,26 и 0,86 мг/кг (3 и 10 мг в пересчете на человека) способствует снижению выраженности бронхоспазма в 1,6-2,6 раза по сравнению с группой контроля. Терапевтические эффекты сохраняются на протяжении 2-3-х часов в зависимости от вводимой дозы антидота. Показана целесообразность повторного введения атропина с интервалом 2 ч. Двукратное ингаляционное применение антидота в дозе 0,26 мг/кг в соответствии с предложенной схемой позволяет полностью купировать проявления бронхоконстрикции и предотвратить рецидивы дыхательных нарушений. Установлено, что повторное применение атропина в дозе 0,86 мг/кг характеризуется усилением токсического действия фосфорорганическим соединением и сопровождается увеличением доли погибших животных. Полученные результаты указывают на недопустимость ингаляционного применения атропина в дозах, превышающих 3 мг. Ключевые слова фосфорорганические соединения; функция внешнего дыхания; атропин; эффективность; ингаляционное применение (статья в формате PDF. Для просмотра необходим Adobe Acrobat Reader) ![]() Список литературы 1. Eddleston M., Mohamed F., Davies J. Respiratory failure in acute organophosphorus pesticide self-poisoning. QJM: monthly journal of the Association of Physicians. 2006; 99: 513-522. 2. Иванов И.М., Субботина С.Н., Алхутова И.М., и др. Механизмы нарушений дыхания при отравлениях фосфорорганическими соединениями и направления коррекции при помощи бронхорасширяющих средств. Медлайн.ру. 2022; 23: 185-200. URL: http://medline.ru/public/art/tom23/art12.html (Дата обращения 24.03.2023). 3. Кряжевских А.А., Кряжевских А.А., Субботина С.Н., Склярова Н.А. Влияние фосфорорганических соединений на функцию внешнего дыхания крыс при интратрахеальном и внутрижелудочном введении. Формулы фармации. 2021; 3 (2): 60-65. 4. Rezk P.E., Graham J.R., Moran T.S. Acute toxic effects of nerve agent VX on respiratory dynamics and functions following microinsillation inhalation exposure in guinea pigs. Inhal Toxicol. 2007; 19: 291-302. 5. Lainee P., Robineau P., Guittin P. Mechanisms of pulmonary edema induced by an organophosphorus compound in anesthetized dogs. Fundam Appl Toxicol. 1991; 17: 177-185. 6. Gundavarapu, S., Zhuang J., Barrett E.G. A critical role of acute bronchoconstriction in the mortality associated with high-dose sarin inhalation: effects of epinephrine and oxygen therapies. Toxicol Appl Pharmacol. 2014; 274: 200-208. 7. Hulse E.J., Davies J.O., Simpson A.J. Respiratory complications of organophosphorus nerve agent and insecticide poisoning. Implications for respiratory and critical care. Am J Respir Crit Care Med. 2014; 190(12): 1342-1354. 8. Kamat, S.R., Heera S., Potdar P.V. Bombay experience in intensive respiratory care over 6 years J. Postgrad. Med. 1989; 35: 123-134. 9. Wess J., Eglen R.M., Gautam D. Muscarinic acetylcholine receptors: mutant mice provide new insights for drug development. Nat Rev Drug Discov. 2007; 6: 721-733. 10. Takemura Y., Helms M.N., Eaton A.F. Cholinergic regulation of epithelial sodium channels in rat alveolar type 2 epithelial cells. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2013; 304: 428-437. 11. Segura P., Chávez J., Montaño L.M. Identification of mechanisms involved in the acute airway toxicity induced by parathion. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 1999; 360: 699-710. 12. Herbert J., Thiermann H., Worek F., Wille T. COPD and asthma therapeutics for supportive treatment in organophosphate poisoning. Clin Toxicol (Phila). 2019; 57(7): 644-651. 13. Orma P.S., Middleton R.K. Aerosolized atropine as an antidote to nerve gas. Ann Pharmacother. 1992; 26: 937-938. 14. Kehe C.R., Lasseter K.C., Miller N.C. Comparative absorption of atropine from a metered-dose inhaler and an intramuscular injection. Ther Drug Monit. 1992; 14: 132-134. 15. Corcoran T.E., Venkataramanan R., Hoffman R.M. Systemic delivery of atropine sulfate by the microdose dry-powder inhaler. J Aerosol Med Pulm Drug Deliv. 2013; 26(1): 46-55. 16. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / под общ. ред. Р.У. Хабриева // Москва: Изд-во «Медицина», 2005. 17. Общая токсикология / под ред. Курляндского Б.А., Филова В.А. М.: «Медицина», 2002. 18. Frazer D.G., Reynolds J.S., Jackson M.C. Determining when enhanced pause (Penh) is sensitive to changes in specific airway resistance. Toxicol Environ Health. 2011; 74 (5): 287-295. 19. Солиев А.У. Лечение хронического кашля и бронхиальной астмы. Биология и интегративная медицина. 2017; 5: 47 56. | ||
![]() |