Экстренная профилактика гастростаза у крыс при моделировании миелоабляционной химиотерапии циклофосфаном Medline.ru - медико-биологический информационный портал Медлайн.ру

Экстренная профилактика гастростаза у крыс при моделировании миелоабляционной химиотерапии циклофосфаном

Вакуненкова О.А., Ивницкий Ю.Ю., Краснов К.А., Краснова А.А.

Научно-клинический центр токсикологии имени академика С.Н. Голикова Федерального медико-биологического агентства

Резюме
Изучали влияние вводимого в желудок гидрокарбоната натрия (NaHCO3) на формирование желудочно-кишечного стаза, острого цитостатического мукозита тонкой кишки и экскрецию индикана с мочой при моделировании на крысах миелоабляционной цитостатической терапии внутривенным введением циклофосфана (ЦФ). Введение ЦФ в дозе 390 мг/кг вело к дистрофическим изменениям в слизистой оболочке тонкой кишки, развитию в течение ближайших суток желудочно-кишечного стаза с преобладанием гастростаза и повышению экскреции индикана. Введение за 30 мин до и тотчас после ЦФ в желудок крыс NaHCO3 в дозе, эквивалентной 350 мл его 4 % раствора для человека, смягчало проявления гастростаза и избыточного роста индол-продуцирующей желудочно-кишечной микрофлоры. Представленный подход к экстренной медикаментозной профилактике желудочно-кишечных осложнений миелоабляционной цитостатической фармакотерапии перспективен для апробации при использовании в качестве цитостатического агента не только ЦФ, но и других медикаментозных средств алкилирующего действия.

Ключевые слова
циклофосфан; миелоабляционная цитостатическая терапия; крысиная модель; гастростаз; индикан; гидрокарбонат натрия; экстренная профилактика

(статья в формате PDF. Для просмотра необходим Adobe Acrobat Reader)

открыть статью в

новом окне

Список литературы

Шефер Т.В., Ивницкий Ю.Ю., Рейнюк В.Л. Моделирование миелоабляционной цитостатической терапии сопровождается желудочно-кишечным стазом у крыс. Медицина экстремальных ситуаций.2022; (1): 51-55.

2. Jacobse J., Mensink H., Eileen M., Kollen W., Bresters D., Bredius R. Long-term aprepitant for nausea and vomiting associated with gastroparesis in hematopoietic cell transplantation. Bone Marrow Transplant.2018; 53(10): 1372-1374.

3. Shivarudraiah M., Patel A., Singh S. Acute severe gastroparesis (mega-stomach), an unusual complication of autologous stem cell transplantat: a case report. Canc. Res. Stat. Treat. 2022; 5(3): 584-587.

4. Patel R., Soni M., Soyantar B., Shivangi S., Sutaria S., Saraf M., Goswami D. A clash of quorum sensing vs quorum sensing inhibitors: an overview and risk of resistance. Arch. Microbiol.2023; 205(4): 107.

5. Buchholz B. M., Bauer A. J. Membrane Tlr signaling mechanisms in the gastrointestinal tract during sepsis. Neurogastroenterol. Motility.2010; (22): 232-245.

6. Chapman M. J., Nguyen N. Q., Deane A. M. Gastrointestinal dysmotility: clinical consequences and management of the critically ill patient. Gastroenterol. Clin. North Am.2011; 40(4); 725-739.

7. Grover M., Gianrico F., Stanghellini V. Gastroparesis: a turning point in understanding and treatment. Gut.2019; 68(12): 2238-2250.

8. Zheng T., Camilleri M. Management of gastroparesis. Gastroenterol. Hepatol.2021; 17(11): 515-525.

9. Sangild P.T., Shen R.L., Pontoppidan P., Rathe M. Animal models of chemotherapy-induced mucositis: translational relevance and challenges. Am. J. Physiol. Gastrointest. Tract Liver.2017; 314(2): 231-246.

10. Anderson L. W., Chen T. L., Colvin O. M., Grochow L. B., Collins J. M., Kennedy M. J. et al. Cyclophosphamide and 4-hydroxycyclophosphamide / aldophosphamide kinetics in patients receiving high-dose cyclophosphamide chemotherapy. Clin. Cancer. Res.1996; 2(9): 1481-1487.

11. Kuris G., Ambroziak W., Pietruszko R. Human aldehyde dehydrogenase. J. Biol. Chem.1989; 264(8): 4715-4721.

12. Tieze L., Neumann M., Fischer R., Rajewsky M., Jähde E. Proton-mediated liberation of aldophosphamide from a nontoxic prodrug: a strategy for tumor-selective activation of cytocidal drug. Canc. Res.1989; 49(15): 4179-4184.

13. Шефер Т.В., Рейнюк В.Л., Малаховский В.Н., Ивницкий Ю.Ю. Отягощение острых неврологических расстройств, вызванных циклофосфаном, при искусственном снижении рН химуса у крыс. Бюл. Эксперим. Биол. Мед.2012; 153(6): 841-846.

14. Рейнюк В.Л. Шефер Т.В., Краснов К.А., Ивницкий Ю.Ю. Влияние циклофосфана и лактулозы на поступление аммиака и веществ средней молярной массы из кишечника в кровь у крыс. Бюл. Эксперим Биол. Мед.2012; 154(10): 455-459.

15. Seydoux C., Medinger M., Gerull S., Halter J., Heim D., Chalandon Y. et al. Busulfan-cyclophosphamide versus cyclophosphamide-busulfan as conditioning regimen before allogenic hematopoietic cell transplantation: a prospective randomized trial. Ann. Hematol.2021; 100(1): 209-216.

16. Мартынов В. Л., Семeнов А. Г., Тулупов А. А., Чесноков А. А., Курилов В. А., Казарина Н. В. Индикан мочи и водородный дыхательный тест как методы скрининг-диагностики синдрома избыточного бактериального роста в тонкой кишке. Мед. Альм.2017; 2(47): 117-121.

17. Балаховский С. Д., Балаховский И. С. Методы химического анализа крови.М.: Медгиз; 1953.

18. Zar J.H. Biostatistical Analysis. 5thPrentice-Hall/Pearson, Upper Saddle River: 2010.

19. O?Grady J., Murphy C.L., Burry L., Shanahan F., Buckly M. Defining gastrointestinal transit time using video capsule endoscopy: a study of healthy subjects. Endosc. Int. Open.2020; 8(3): E396-E400.

20. Yang L., Yan C., Zhang F., Jiang B., Gao S., Liang Y. et al. Effects of ketoconazole on cyclophosphamide metabolism: evaluation of CYP3A4 inhibition effect using the in vitro and in vivo models. Exp. Anim.2018; 67(1): 71-82.

21. Sahu K., Langeh U., Singh C., Singh A. Crosstalk between anticancer drugs and mitochondrial functions. Curr. Res. Pharmacol. Drug Discov.2021; (2): 100047.

22. Sunil V., Vayas K., Radbel J., Abramova E., Gow A., Laskin J., Laskin D. Impaired energy metabolism and altered functional activity of alveolar type II epithelial cell following exposure of rats to nitrogen mustard. Toxicol. Appl. Pharmacol.2022; 456: 116257.

23. Dahlgren D., Sjöblom M., Hellström P., Lennemäs H. Chemotherapeutics-induced intestinal mucositis: pathophysiology and potential treatment strategies. Front. Pharmacol.2021; 12 (Art. 681417): 1-12.