Оптимизация криоконсервации гемопоэтических стволовых клеток полученных из периферической крови при высоком лейкоцитозе Medline.ru - медико-биологический информационный портал Медлайн.ру

Оптимизация криоконсервации гемопоэтических стволовых клеток полученных из периферической крови при высоком лейкоцитозе

Степанов А.А.1, Коротаев Е.В.1, Бессмельцев С.С.2, Рабинович В.И.1, Пономарев С.А.1, Хорева О.Е.3

1АУ «Югорский НИИ клеточных технологий с банком стволовых клеток»,
Ханты-Мансийск, Россия г. Ханты-Мансийск, ул. Мира 127-Б, тел./факс (3467)32-87-46
эл. почта: glagolmail@gmail.com
2 ФГБУ «Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства», Санкт-Петербург
3БУ «Сургутская окружная клиническая больница», Сургут

Резюме
Показано, что концентрация ядросодержащих клеток (ЯСК) в лейкоконцентрате, полученном путем лекоцитафереза из периферической крови, – высоковариабельный показатель (46 – 370×109 ЯСК/л), который влияет на сохранность гемопоэтических стволовых клеток (ГСК) на этапе добавления в трансплантат криопротектора диметилсульфоксида. Зарегистрировано 16% клинических случаев, когда сохранность ГСК после добавления диметилсульфоксида составила менее 50% от заготовленной дозы. При этом данные лейкоконцентраты имели лейкоцитоз более 150×109 ЯСК/л. Нами предложен метод расчета объема аутоплазмы необходимой для разбавления трансплантата с целью снижения его лейкоцитоза ниже 150×109 ЯСК/л. Апробация метода показала возможность достоверно (p < 0,05) повысить сохранность ГСК при криоконсервации.

Ключевые слова
аутологичная трансплантация, гемопоэтические стволовые клетки, криоконсервация, криопротектор, лейкоцитаферез.

(статья в формате PDF. Для просмотра необходим Adobe Acrobat Reader)

открыть статью в

новом окне

Список литературы

1. Bolwell B.J., Pohlman B., Rybicki L. at al. Patients mobilizing large numbers of CD34+ cells ('super mobilizers') have improved survival in autologous stem cell transplantation for lymphoid malignancies // Bone Marrow Transplantation. – 2007. – Vol. 40 – P. 437-441.

2. Wahlin A., Eriksson M., Hultdin M. Relation between harvest success and outcome after autologous peripheral blood stem cell transplantation in multiple myeloma // European Journal of Haematology. – 2004. – Vol. 73, № 4. – P. 263-268.

3. Sola, C., Maroto P., Salazar R. Bone marrow transplantation: prognostic factors of peripheral blood stem cell mobilization with cyclophosphamide and filgrastim (r-metHuGCSF): the CD34+ cell dose positively affects the time to hematopoietic recovery and supportive requirements after high-dose chemotherapy // Hematology. – 1999. – Vol. 4. – Р. 195-209.

4. Passweg J.R., Baldomero H., Bregni M. et al. Hematopoietic SCT in Europe: data and trends in 2011 // Bone Marrow Transplantation. – 2013. – Vol. 48. – P.1161-1167.

5. Bensinger W., Appelbaum F., Rowley S.J. et al. Factors that influence collection and engraftment of autologous peripheral-blood stem cells // Clinical Oncology. – 1995. – Vol. 13, N 10. – P. 2547-2555.

6. Грицаев С.В., Кузяева А.А., Волошин С.В. и др. Заготовка трансплантата для аутологичной трансплантации гемопоэтических стволовых клеток онкогематологическим больным: частота и причины неудачных сборов // Российский Медицинский Журнал «Онкология». – 2013. – №1. – С. 30-36.

7. Mazumder A., Kaufman J., Niesvizky R. Effect of lenalidomide therapy on mobilization of peripheral blood stem cells in previously untreated multiple myeloma patients // Leukemia. – 2008. – Vol. 22. – Р. 1280-1281.

8. Yang S.M., Chen H., Chen Y.H. et al. The more, the less: age and chemotherapy load are predictive of poor stem cell mobilization in patients with hematologic malignancies // Chinese Medicine journal. – 2012. – Vol. 125. – Р. 593-598.

9. Liseth, K., Abrahamsen J.F., Bjorsvik S. et al. The viability of cryopreserved PBPC depends on the DMSO concentration and the concentration of nucleated cells in the graft // Cytotherapy. – 2005. – Vol. 7. – P. 328-333.

10. Gurtuvenko A.A., Anwar J. Modulating the structure and properties of cell membranes: the molecular mechanism of action of dimethyl sulfoxide // J. Phys. Chem. B. – Sep., 2007 – Vol. 6. – N. 111. – P. 10453-10460.

11. Чуйко В.А. Механизм криозащитной эффективности и фармакологические свойства ДМСО // Проблемы криобиологии. – 1989. – №3. – С. 3-10.

12. Olarewaju О.О. Designing an optimal cryopreservation protocol for human embryonic stem cells: A systematic approach: A thesis submitted for the degree Master of Philosophy: Biochemistry / Oluseun Olushola Olarewaju. – University of York, Department of Biology. – 2010. – P. 236.

13. Hunt C.J., Armitage S.E., Pegg D.E. et al. Cryopreservation of umbilical cord blood: 2. Tolerance of CD34(+) cells to multimolar dimethyl sulphoxide and the effect of cooling rate on recovery after freezing and thawing // Cryobiology. – 2003. – Vol. 46 – P. 76-87.

14. Zambelli A., Poggi G., Da Prada G. et al. Clinical toxicity of cryopreserved circulating progenitor cells infusion //Anticancer Res. – 1998. – Vol. 18. – P. 4705-4708.

15. Burger J., Gilmore M.J., Jackson B. et al. Acute haemoglobinaemia associated with the reinfusion of bone marrow buffy coat for autologous bone marrow transplantation //Bone Marrow Transplant. – 1991. – Vol. 7, N 4. – P. 322-324.

16. Higman M.A., Port J.D., Beauchamp Jr N.J. et al. Reversible leukoencephalopathy associated with re-infusion of DMSO preserved stem cells //Bone Marrow Transplant. – 2000. – Vol. 26, N 7). – P. 797-800.