banner medline tsn
МЕДЛАЙН.РУ
Содержание журнала

Архив

Редакция
Учредители

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки
Институт теоретической и экспериментальной биофизики
Российской академии наук


ООО "ИЦ КОМКОН"

ФГБУН "Институт токсикологии" ФМБА России

Адрес редакции и реквизиты

192012, Санкт-Петербург, ул.Бабушкина, д.82 к.2, литера А, кв.378

Свидетельство о регистрации электронного периодического издания ЭЛ № ФС 77-37726 от 13.10.2009
Выдано - Роскомнадзор

ISSN 1999-6314


Клиническая медицина » Терапия • Гематология

Том: 25
Статья: « 29 »
Страницы:. 542-565
Опубликована в журнале: 15 октября 2024 г.
English version

Микрочастицы − потенциальный маркер оценки качества концентрата тромбоцитов

Гришина Г.В.1, Касьянов А.Д.1, Кробинец И.И.1, Матвиенко О.Ю.1, Ласточкина Д.В.1, Голованова И.С.1, Бессмельцев С.С.1,2

1Федеральное государственное бюджетное учреждение «Российский научно-исследовательский институт гематологии и трансфузиологии Федерального медико-биологического агентства», Санкт-Петербург
2Федеральное государственное бюджетное учреждение здравоохранения высшего образования «Северо-Западный государственный медицинский университет имени И.И. Мечникова» Министерства здравоохранения Российской Федерации


Резюме
Обзор посвящен данным, касающимся заготовки, хранения и контроля качества концентрата тромбоцитов. Продолжается поиск метода, позволяющего оценить функциональное состояние тромбоцитов в концентрате тромбоцитов. Однако в настоящее время ни один тест in vitro не используется в рутинной практике для характеристики переливаемых тромбоцитов и различия между эффективным и неэффективным компонентом. Цель исследования. С учетом результатов основных исследований, проведенных в последние годы, выявить перспективный подход к оценке качества концентрата тромбоцитов для повышения его эффективности и безопасности трансфузий. Материалы и методы. Использованы ресурсы поисковых систем РИНЦ и Pub Med. Поиск проводился по международным базам данных за 2014-2024 гг. Особое внимание уделено методам оценки активации тромбоцитов в концентрате тромбоцитов. Результаты. Описаны возможности и преимущества рационального подхода к переливанию концентрата тромбоцитов с учетом степени активации тромбоцитов с целью оптимизации объема заготовки и повышения эффективности концентрата тромбоцитов при проведении как лечебных, так и профилактических трансфузий. Заключение. Рациональный персонализированный подход к переливанию концентрата тромбоцитов с учетом степени активации тромбоцитов и потенциального маркера - тромбоцитарных микрочастиц приведет к улучшению клинической эффективности, определяемой приростом числа тромбоцитов после трансфузии, устойчивым гемостазом и снижением риска развития посттрансфузионных реакций у реципиентов.


Ключевые слова
трансфузия, концентрат тромбоцитов, микрочастицы, рефрактерность, динамическое рассеяние света


(статья в формате PDF. Для просмотра необходим Adobe Acrobat Reader)



открыть статью в новом окне

Список литературы

1. Гапонова Т.В., Капранов Н.М., Тихомиров Д.С. и др. Характеристика основных тенденций в работе службы крови Российской Федерации в 2016-2020 годах. Гематология и трансфузиология. 2022;67(3):388-397. https://doi.org/10.35754/0234-5730-2022-67-3-388-397.


2. Даваасамбуу Б., Грицаев С.В., Глазанова Т.В. и др. Эффективность трансфузий тромбоконцентрата при острых миелоидных лейкозах в период проведения стандартной индукционной химиотерапии. Клиническая онкогематология. Фундаментальные исследования и клиническая практика. 2014; 7(2):213-219.


3. Чечеткин А.В., Макеев А.Б., Киселева Е.А. Обеспечение безопасности и качества тромбоцитов для трансфузий онкогематологическим больным. Гематология и трансфузиология. 2016; 1(1):80.


4. Румянцев А.Г., Мадзаев С.Р., Филина Н.Г. и др. Эффективность переливания тромбоцитов. Гематология. Трансфузиология. Восточная Европа. 2015;2:16-24.


5. Hegde S, Akbar H, Zheng Y, Cancelas JA. Towards increasing shelf life and haemostatic potency of stored platelet concentrates. Curr Opin Hematol. 2018 Nov;25(6):500-508.


6. Arraud N., Linares R., Tan S. et al. Extracellular vesicles from blood plasma: determination of their morphology, size, phenotype and concentration. J Thromb Haemost. 2014; 12:614-27.


7. Greening D.W., Simpson R.J., Sparrow R. L. Preparation of platelet concentrates for research and transfusion purposes. Methods Mol. Biol. 2017;1619:31-42.


8. Vasconcelos E., Figueiredo A. C., Seghatchian J. Quality of platelet concentrates derived by platelet rich plasma, buffy coat and apheresis. Transfus Apher Sci. 2003 Aug;29(1):13-16.


9. Bohec P, Gachelin J, Ollivier V. et al. Acoustophoretic purification of platelets: feasibility and impact on platelet activation and function. Platelets. 2019;30(2):174-180.


10. Колесникова И.М., Ройтман Е.В., Карпова О.В., Румянцев С.А. Изменение гемостатических свойств тромбоцитов при хранении тромбоцитных концентратов. Медицинский алфавит. 2016;3 (19):61-62.


11. Vucic M, Stanojkovic Z, Antic A, Vucic J, Pavlovic V. Evaluation of platelet activation in leukocyte-depleted platelet concentrates during storage. Bosn J Basic Med Sci. 2018 Feb 20;18(1):29-34. doi: 10.17305/bjbms.2017.2321.


12. Singh S, Shams Hakimi C, Jeppsson A, Hesse C. Platelet storage lesion in interim platelet unit concentrates: A comparison with buffy-coat and apheresis concentrates. Transfus Apher Sci. 2017;56(6):870-874. doi: 10.1016/j.transci.2017.10.004.


13. Wang S, Yuan J, Yang J et al. Advancement of platelet-inspired nanomedicine. Platelets. 2018;29(7):690-694. doi: 10.1080/09537104.2018.1475633


14. Sen Gupta A. Bio-inspired nanomedicine strategies for artificial blood components. Wiley Interdiscip Rev Nanomed Nanobiotechnol. 2017;9(6):10.1002/wnan.1464.


15. Пальцын А.А. Микрочастицы тромбоцитов. Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 2017; 61(1): 99‒105. https://pfiet.ru/article/view/440/354. Russian


16. Shea SM, Thomas KA, Spinella PC. The effect of platelet storage temperature on haemostatic, immune, and endothelial function: potential for personalised medicine. Blood Transfus. 2019;17(4):321-330. doi: 10.2450/2019.0095-19.


17. Milford EM, Reade MC. Comprehensive review of platelet storage methods for use in the treatment of active hemorrhage. Transfusion. 2016;56 (2): 140-148. doi: 10.1111/trf.13504.


18. Bynum JA, Meledeo MA, Getz TM et al. Bioenergetic profiling of platelet mitochondria during storage: 4°C storage extends platelet mitochondrial function and viability. Transfusion. 2016;56 (1):76-84. doi: 10.1111/trf.13337.


19. Ng MSY, Tung JP, Fraser JF. Platelet Storage Lesions: What More Do We Know Now? Transfus Med Rev. 2018 Apr 17: S0887-7963(17)30189-X. doi: 10.1016/j.tmrv.2018.04.001.


20. Жибурт Е.Б., Хамитов Р.Г, Похабов Д.С. и др. Обновление европейских правил заготовки и переливания крови. Трансфузиология. 2024; 25(1):30-38.


21. Горожанская Э.Г., Свиридова С.П., Байкова В.Н. и др. Окислительный стресс в тромбоцитах при онкопатологии. Биомедицинская химия. 2015;61(4):519-525.


22. Maurer-Spurej E, Chipperfield K. Past and future approaches to assess the quality of platelets for transfusion. Transfus Med Rev. 2007;21(4):295-306. doi: 10.1016/j.tmrv.2007.05.005.


23. Aubron C, Flint AWJ, Ozier Y, McQuilten Z. Platelet storage duration and its clinical and transfusion outcomes: a systematic review. Crit Care. 2018 Aug 5;22(1):185.


24. Карпова О.В., Ройтман Е.В., Игнатова А.А. Оценка качества тромбоцитного концентрата, заготовленного методом афереза с использованием добавочного раствора SSP+. Вопросы гематологии, онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2014; 13(2): 20-4.


25. Handigund M., Cho Y.G. Insights into platelet storage and the need for multiple approaches. Ann. Clin. Lab. Sci. 2015;45(6):713-9. PMID: 26663804.


26. Sut C, Aloui C, Tariket S et al. Assessment of soluble platelet CD40L and CD62P during the preparation process and the storage of apheresis platelet concentrates: Absence of factors related to donors and donations. Transfus. Clin. Biol. 2018;25(3):192-196. doi: 10.1016/j.tracli.


27. Millar D, Hayes C, Jones J et al. Comparison of the platelet activation status of single-donor platelets obtained with two different cell separator technologies. Transfusion. 2020;60(9):2067-2078. doi: 10.1111/trf.15934.


28. Reddoch-Cardenas KM, Montgomery RK, Lafleur CB et al. Cold storage of platelets in platelet additive solution: an in vitro comparison of two Food and Drug Administration-approved collection and storage systems. Transfusion. 2018;58(7):1682-1688. doi: 10.1111/trf.14603.


29. Кищенко В.В., Сироткина О.В., Сидоркевич С.В., Вавилова Т.В. Тромбоцитарные везикулы−потенциальный маркер качества концентрата тромбоцитов. Профилактическая и клиническая медицина. 2020; 77 (4): 93‒101.


30. Халиулин А.В., Гусякова О.А., Козлов А.В., Габрильчак А.И. Процессы метаболизма и механизмы регуляции активности тромбоцитов (обзор литературы). Клиническая лабораторная диагностика. 2019; 64 (3): 164-169.


31. Noulsri E, Lerdwana S. Quantitation of phosphatidylserine-exposing platelets and platelet-derived microparticles in platelet products: A new strategy to improve efficacy of platelet transfusion. Med Hypotheses. 2020; 145:110306. doi: 10.1016/j.mehy.2020.110306.


32. Antwi-Baffour S., Adjei J., Aryeh C. et al. Understanding the biosynthesis of platelets-derived extracellular vesicles. Immun Inflamm Dis. 2015; 3(3):133-40.


33. Maurer-Spurej E, Brown K, Labrie A et al. Portable dynamic light scattering instrument and method for the measurement of blood platelet suspensions. Physics in Medicine and Biology. 2006;51(15):3747-3758.


34. Marcoux G, Duchez AC, Rousseau M et al. Microparticle and mitochondrial release during extended storage of types of platelet concentrates. Platelets. 2017;28(3):272-280.


35. Maurer-Spurej E., Larsen R., Labrie A. et al. Microparticle content of platelet concentrates ispredicted by donor microparticles and is altered by production methods and stress. Transfusion and Apheresis Science. 2016;55(1):35-43. doi: 10.1016/j.transci.2016.07.010.


36. Cognasse F, Hamzeh-Cognasse H, Laradi S et al. The role of microparticles in inflammation and transfusion: A concise review. Transfus Apher Sci. 2015;53(2):159-67.


37. Labrie A, Marshall A, Bedi H, Maurer-Spurej E. Characterization of platelet concentrates using dynamic light scattering. Transfus Med Hemother. 2013;40(2):93-100.


38. Elvira L, Fernández A, León L et al. Evaluation of the Cell Concentration in Suspensions of Human Leukocytes by Ultrasound Imaging: The Influence of Size Dispersion and Cell Type. Sensors (Basel). 2023;23(2):977. doi: 10.3390/s23020977.


39. Maurer-Spurej E, Chipperfield K. Could Microparticles Be the Universal Quality Indicator for Platelet Viability and Function? J Blood Transfus. 2016;2016:6140239.


40. Saas P, Angelot F, Bardiaux L et al. Phosphatidylserine-expressing cell by-products in transfusion: A pro-inflammatory or an anti-inflammatory effect? Transfus Clin Biol. 2012 Jun;19(3):90-7. doi: 10.1016/j.tracli.2012.02.002.


41. Gilstad CW. Anaphylactic transfusion reactions. Curr Opin Hematol. 2003;10:419-423.


42. Pienimaeki-Roemer A., Kuhlmann K., Böttcher A et al. Lipidomic and proteomic characterization of platelet extracellular vesicle subfractions from senescent platelets. Transfusion. 2015;55(3):507-521. doi: 10.1111/trf.12874.


43. Yan Y, Zhang J, Zhang Q et al. The role of microRNAs in platelet biology during storage. Transfus Apher Sci. 2017;56(2):147-150. doi: 10.1016/j.transci.2016.10.010.


44. Mukai N, Nakayama Y, Ishi S et al. Cold storage conditions modify microRNA expressions for platelet transfusion. PLoS One. 2019;14(7): e0218797. doi: 10.1371/journal.pone.0218797.


45. Elgendy W, Swelem R, Aboudiba N, Elwafa RA. Role of MicroRNA-326 and its Target Genes Bcl-xL and Bak as Potential Markers in Platelet Storage Lesion in Blood Banks. Indian J Hematol Blood Transfus. 2022 Oct;38(4):731-738. doi: 10.1007/s12288-022-01542-0.


46. Singh S, Shams Hakimi C, Jeppsson A, Hesse C. Platelet storage lesion in interim platelet unit concentrates: A comparison with buffy-coat and apheresis concentrates. Transfus Apher Sci. 2017;56(6):870-874. doi: 10.1016/j.transci.2017.10.004.


47. Raczat T, Kraemer L, Gall C et al. The influence of four different anticoagulants on dynamic light scattering of platelets. Vox Sang. 2014;107(2):196-199.


48. Kanzler P, Mahoney A, Leitner G et al. Microparticle detection to guide platelet management for the reduction of platelet refractoriness in children - A study proposal. Transfus Apher Sci. 2017;56(1):39-44. doi: 10.1016/j.transci.2016.12.016.


49. Sigle JP, Medinger M, Stern M et al. Prospective change control analysis of transfer of platelet concentrate production from a specialized stem cell transplantation unit to a blood transfusion center. J Clin Apheresis. 2012;27:178-182.


50. Black A., Pienimaeki-Roemer A., Kenyon O et al. Platelet-derived extracellular vesicles in plateletpheresis concentrates as a quality control approach. Transfusion. 2015;55(9):2184-2196. doi: 10.1111/trf.13128.


51. Apelseth T. O., Bruserud Ø., Wentzel-Larsen T., Hervig T. Therapeutic efficacy of platelet transfusion in patients with acute leukemia: an evaluation of methods. Transfusion. 2010;50(4):766-775. doi: 10.1111/j.1537-2995.2009.02540.x.


52. Johnson L., Tan S., Wood B. et al. Refrigeration and cryopreservation of platelets differentially affect platelet metabolism and function: a comparison with conventional platelet storage conditions. Transfusion. 2016;56(7):1807-1818. doi: 10.1111/trf.13630.


53. Millar D, Murphy L, Labrie A, Maurer-Spurej E. Routine Screening Method for Microparticles in Platelet Transfusions. J Vis Exp. 2018:31;(131):56893. doi: 10.3791/56893.


54. Серебряная Н.Б., Шанин С.Н., Фомичева Е.Е., Якуцени П.П. Тромбоциты как активаторы и регуляторы воспалительных и иммунных реакций. Часть 2. Тромбоциты как участники иммунных реакций. Медицинская иммунология. 2019;21(1):9-20. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2019-1-9-20


55. Ramsey M.T., Fabian T.C., Shahan C.P. et al. A prospective study of platelet function in trauma patients. J Trauma. Acute Care Surgery. 2016; 80 (5): 726-33.


56. Пономаренко Е.А., Игнатова А.А., Федорова Д.В. и др. Функциональная активность тромбоцитов: физиология и методы лабораторной диагностики. Вопросы гематологии/онкологии и иммунопатологии в педиатрии. 2019; 18 (3): 112‒119.


57. Xu Y., Nakane N., Maurer-Spurej E. Novel test for microparticles in platelet-rich plasma and platelet concentrates using dynamic light scattering. Transfusion. 2011;51(2):363-370. doi: 10.1111/j.1537-2995.2010.02819.x


58. Foster B. P., Balassa T., Benen T. D. et al. Extracellular vesicles in blood, milk and body fluids of the female and male urogenital tract and with special regard to reproduction. Critical Reviews in Clinical Laboratory Sciences. 2016:1-17.


59. Simak J., Gelderman M. P. Cell membrane microparticles in blood and blood products: potentially pathogenic agents and diagnostic markers. Transfusion Medicine Reviews. 2006;20(1):1-26. doi: 10.1016/j.tmrv.2005.08.001.


60. Boilard E., Duchez A.-C., Brisson A. The diversity of platelet microparticles. Current Opinion in Hematology. 2015;22(5):437-444. doi: 10.1097/MOH.0000000000000166.


61. Сироткина О.В. Исследование функциональной активности тромбоцитов: история, современность, перспективы. Молекулярно-биологические технологии в медицинской практике. 2010; 15:60-74.