banner medline tsn
МЕДЛАЙН.РУ
Содержание журнала

Архив

Редакция
Учредители

Федеральное государственное бюджетное учреждение науки
Институт теоретической и экспериментальной биофизики
Российской академии наук


ООО "ИЦ КОМКОН"

ФГБУН "Институт токсикологии" ФМБА России

Адрес редакции и реквизиты

192012, Санкт-Петербург, ул.Бабушкина, д.82 к.2, литера А, кв.378

Свидетельство о регистрации электронного периодического издания ЭЛ № ФС 77-37726 от 13.10.2009
Выдано - Роскомнадзор

ISSN 1999-6314


Фундаментальные исследования • Биофизика

Том: 14
Статья: « 28 »
Страницы:. 295-312
Опубликована в журнале: 10 апреля 2013 г.
English version

Стимуляция развития ранних эмбрионов мышей под воздействием искусственного солнечного света с дополнительной люминесцентной оранжево-красной компонентой

Чернов А.С.1,2, Решетников Д.А.2, Фахранурова Л.И.1, Манохин А.А.3,
Давыдова Г.А.1,2, Селезнева И.И.1,2, Храмов Р.Н.1

1 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт теоретической и экспериментальной биофизики Российской академии наук, 142290, Московская обл.,
г. Пущино, ул. Институтская, д.3.
2Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Пущинский государственный естественно-научный институт», 142290, Московская обл., г. Пущино, пр. Науки, д.3.
3 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биофизики клетки Российской академии наук, 142290, Московская обл, г.Пущино, ул. Институтская 3



Резюме
Проведено исследование воздействия света ксеноновой лампы, преобразованного экранами, содержащими слой оксисульфида иттрия активированного европием (искусственного солнечного света), на развитие доимплантационных эмбрионов мыши in vitro. Показано, что облучение преобразованным светом (ПСС) с дополнительной люминесцентной компонентой (λmax = 626нм) значительно снижает процент аномально развитых и нежизнеспособных эмбрионов. Максимальное положительное воздействие ПСС реализуется при дозе облучения 20Дж/см2 с энергией люминесцентной оранжево-красной компоненты 0,8 Дж/см2.


Ключевые слова
доимплантационные эмбрионы, бластоцисты, преобразованный солнечный свет, фотостимуляция раннего развития


(статья в формате PDF. Для просмотра необходим Adobe Acrobat Reader)



открыть статью в новом окне

Список литературы

1. Межевикина Л.М., Сахарова Н.Ю., Вепринцев Б.Н. В сб.: Проблемы сохранения и поддержания генетических коллекций лабораторных животных. Пущино, 1991, С. 102-112.


2. Roberts R.M. Embryo culture conditions: what embryos like best. Endocrinology 2005, May. 146(5): 2140-1.


3. Takenaka M., Horiuchi T., Yanagimachi R. Effects of light on development of mammalian zygotes. Proc Natl Acad Sci USA 2007, 104(36): 14289-93.


4. Hegele-Hartung С., Schumacher A., Fisher B. Effects of visible light and room temperature on the ultrastructure of preimplantation rabbit embryos: a time course study. Anat Embryol 1991, 183: 559-571.


5. Oh S.J., Gong S.P., Lee, S.T. Light intensity and wavelength during embryo manipulation are important factors for maintaining viability of preimplantation embryos in vitro. Fertil. Steril 2007, 88 (4): 1150-1157.


6. Schumacher A., Fischer B. Influence of visible light and room temperature on cell proliferation in preimplantation rabbit embryos. J. Reprod. Fertil 1988, 4(1):197-204


7. Takahashi M., Saka N., Takahashi H., Kanai Y., Schultz R.M., Okano A. Assessment of DNA damage in individual hamster embryos by comet assay. Mol. Reprod. Dev 1999, 54(1): 1-7.


8. Oh S.J., Gong S.P., Lee, S.T. Light intensity and wavelength during embryo manipulation are important factors for maintaining viability of preimplantation embryos in vitro. Fertil. Steril 2007, 88(4): 1150-1157.


9. Umaoka Y., Noda Y., Nakayama T., Narimoto K., Mori T., Iritani A. Effect of visual light on in vitro embryonic development in the hamster. Theriogenology 1992, 38(6): 1043-1054.


10. Nakayama T., Noda Y., Goto Y., Mori T. Effects of visible light and other environmental factors on the production of oxygen radicals by hamster embryos. Theriogenology 1994, 41(2): 499-510.


11. Schumacher A., Fischer B. Influence of visible light and room temperature on cell proliferation in preimplantation rabbit embryos. J. Reprod. Fertil 1988, 4 (1): 197-204/


12. Fujihara NA, Hiraki KRN, Marques MM. Irradiation at 780 nm Increases Proliferation Rate of Osteoblasts Independently of Dexamethasone Presence. Lasers Surg Med 2006, 38: 332–336.


13. Tuby H, Maltz L, Oron U. Low-Level Laser Irradiation (LLLI) Promotes Proliferation of Mesenchymal and Cardiac Stem Cells in Culture. Lasers Surg Med 2007, 39: 373–378.


14. Erdle BJ, Brouxhon S, Kaplan M, Vanbuskirk J, Pentland AP. Effects of continuous-wave (670-nm) red light on wound healing. Dermatol Surg 2008, 34(3): 320-5.


15. Ablon G. Combination 830-nm and 633-nm light-emitting diode phototherapy shows promise in the treatment of recalcitrant psoriasis: preliminary findings. Photomed Laser Surg 2010, 28(1): 141-6.


16. Malinovskaya S.L., Drugova O.V., Monich V.A., Mukhina I.V. Effect of low-intensity luminescent radiation on recovery of heart function in postischemic period. Bull Exp Biol Med 1999, (9): 920-921.


17. Malinovskaya S.L., Monich V.A., Artifeksova A.A. Effect of low-intensity laser irradiation and wideband red light on experimentally ischemized myocardium. Bull Exp Biol Med 2008, 145(5): 573-5


18. Князева Т.А., Бадтиева В.А., Зубкова С.М. Лазеротерапия у больных гипертонической болезнью в сочетании с коронарной недостаточностью. Вопросы курортологии, физиотерапии и лечебной физической культуры 1996, (2): 3-5.


19. Stadler I, Evans R, Kolb B, Naim JO, Narayan V, Buehner N, Lanzafame RJ. In vitro effects of low-level laser irradiation at 660 nm on peripheral blood lymphocytes. Lasers Surg Med 2000, (27): 255–261.


20. Khadra M, Lyngstadaas SP, Haanæs HR, Mustafa K. Determining optimal dose of laser therapy for attachment and proliferation of human oral fibroblasts cultured on titanium implant material. J Biomed Mater Res 2005, 73A: 55–62.


21. Pourzarandian A, Watanabe H, Ruwanpura S, Aoki A, Ishikawa I. Effect of low level Er:YAG laser irradiation on cultured human gingival fibroblasts. J Periodontol 2005, 76: 187–193.


22. Hawkins D, Abrahamse H. Effect of multiple exposures of low-level laser therapy on the cellular responses of wounded human skin fibroblasts. Photomed Laser Surg 2006, 24(6): 705–714.


23. Grossman N, Schneid N, Reuveni H, Halevy S, Lubart R. 780 nm low power diode laser irradiation stimulates proliferation of keratinocyte cultures: involvement of reactive oxygen species. Lasers Surg Med 1998, 22: 212–218.


24. Stein A, Benayahu D, Maltz L, Oron U. Low-level laser irradiation promotes proliferation and differentiation of human osteoblasts in vitro. Photomed Laser Surg 2005. 23(2): 161–166.


25. Fujihara NA, Hiraki KRN, Marques MM. Irradiation at 780 nm Increases Proliferation Rate of Osteoblasts Independently of Dexamethasone Presence. Lasers Surg Med 2006 (38): 332–336


26. Schindl A., Merwald H., Schindl L., Kaun C., Wojta J. Direct stimulatory effect of low-intensity 670 nm laser irradiation on human endothelial cell proliferation. Br J Dermatol 2003, 148(2): 334–336.


27. Mirsky N, Krispel Y, Shoshany Y, Maltz L, Oron U. Promotion of angiogenesis by low energy laser irradiation. Antioxid Redox Signal 2002, 4(5): 785–790.


28. Векшин Н.А. Светозависимое фосфорилирование в митохондриях. Мол.биол 1991, 4: 54-59.


29. Tafur J., Mills P.J. Low-intensity therapy: exploring the role of redox mechanisms. Photomedicine and Laser surgery 2008, 26(4): 323-328.


30. Passarella S., Casamassima F., Molinari S. et al. Increase of proton electrochemical potential and ATP synthesis in rat liver mitochondria irradiated in vitro by He-Ne-laser. FEBS Lett 1994, 175: 95-99.


31. Passarella S., Perlino E., Quagliariello E. Evidence of changes induced by He-Ne-laser irradiation in the biochemical properties of rat liver mitochondria. Bioelectrochem. Bioenerg. 1993, 10: 185-198.


32. Karu TI. Mitochondrial Signaling in Mammalian Cells Activated by Red and Near-IR Radiation. Photochem Photobiol 2008, 84: 1091–1099.


33. Lavi R., Shainberg A., Friedmann H., Shneyvays V., Rickover O., Eichler M., Kaplan D., Lubart R. Low energy visible light induces reactive oxygen species generation and stimulates an increase of intracellular calcium concentration in cardiac cells. J Biol Chem 2003, 278(42): 40917-40922.


34. Свиридова–Чайлахян Т.А., Фахранурова Л.И., Паскевич С., Храмов Р.Н., Манохин А.А., Симонова Н.Б., Чайлахян Л.М. Фотобиомодуляция люминесцентным излучением нм развития ранних эмбрионов мышей, Доклады АН, 417(5), 710-714 (2007).


35. Oliveira PC, Meireles GC, dos Santos NR, de Carvalho CM, de Souza AP, dos Santos JN, Pinheiro AL. The use of light photobiomodulation on the treatment of second-degree burns: a histological study of a rodent model. Photomed Laser Surg 2008, 26(4): 28.


36. Монич В.А., Малиновская С.Л., Монич Е.А. Монохроматизированный видимый свет, как фактор воздействия на биологические ткани. Нижегородский мед. Журнал 1992, (1): 104-107.


37. Saczko J., Kulbaska J., Chwilkowska A., Drag-Zalesiniska M., Wysocka T., Lugowski M., Banas T. The influence of photodynamic therapy on apoptosis in human melanoma cell line. Folia Histochem Cytobiol 2005, 43(3):129-32.


38. Khramov ,R.,N, Bratkova,L.,R., Gapeyev,A.,B., Chemeris,N.,K., Schelokov,R.,N.and Sukharev,S.,A. From "safe sun" strategy toward "useful sun" one. In:Biological Effects of light 1995(M.F.Holick and A.M.Kligman eds.) W. de Gruyter, Berlin, (1996)192-194.


39. Манк М. Биология развития млекопитающих. Методы. М.: Мир, 1990. 406 с.


40. Nakayama T., Noda Y., Goto Y., Mori T. Effects of visible light and other environmental factors on the production of oxygen radicals by hamster embryos. Theriogenology 1994, 41(2): 499-510.


41. Yu W, Naim JO, McGowan M, Ippolito K, Lanzafame RJ. Photomodulation of oxidative metabolism and electron chain enzymes in rat liver mitochondria. Photochem Photobiol 1997, 66(6):866–871.


42. Schroeder P, Pohl C, Calles C, Marks C, Wild S, Krutmann J. Cellular response to infrared radiation involves retrograde mitochondrial signalling. Free Radic Biol Med 2007, 43: 128–135.