Ранние изменения внеклеточной днк и других показателей в периферической крови при облучении области мочевого пузыря Medline.ru - медико-биологический информационный портал Медлайн.ру

Ранние изменения внеклеточной днк и других показателей в периферической крови при облучении области мочевого пузыря

Васильева И.Н., Корытов О.В., Беспалов В.Г., Семенов А.Л., Иванов С.Д., Корытова Л.И.

Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Петрова
Российский научный центр радиологии и хирургических технологий им. ак. А.М. Гранова

Резюме
На модели лучевого цистита исследовано изменение числа форменных элементов крови, внеклеточной ДНК (внДНК) и некоторых других показателей - холестерина, гамма-глутамилтрансферазы, мочевины, триглицеридов (ТГ) и щелочной фосфатазы сыворотки крови в ранние сроки после локального облучения области таза самок крыс Вистар в дозе 25 Гр. Облучение области мочевого пузыря крыс проводили на линейном ускорителе электронов. Через 6 ч после воздействия наблюдалось уменьшение абсолютного числа лейкоцитов, лимфоцитов, моноцитов, через 24 ч - гранулоцитов. Через 6 и 24 ч после облучения наблюдалось значимое повышение содержания внДНК сыворотки крови, нормализующееся через 48 ч. Облучение приводило к значимому снижению содержания ТГ сыворотки крови через 24 ч после воздействия, не меняя другие исследованные показатели метаболизма. По данным корреляционного анализа, относительное изменение содержания внДНК (0 ч против 6 ч) коррелировало с изменениями ТГ (0 ч против 24 ч), при отсутствии значимых корреляций со снижения числа форменных элементов крови.

Ключевые слова
локальное облучение, лучевой цистит, форменные элементы крови, внеклеточная ДНК, триглицериды.

(статья в формате PDF. Для просмотра необходим Adobe Acrobat Reader)

открыть статью в

новом окне

Список литературы

1. Villeirs L., Tailly Th., Ost P. et al. Hyperbaric oxygen therapy for radiation cystitis after pelvic radiotherapy: systematic review of the recent literature // Int. J. Urology. 2020. Vol. 27, N 2. P. 98-107. doi: 10.1111/iju.14130.

2. Oscarsson N., Müller B., Rosen A. et al. Radiation-induced cystitis treared with hyperbaric oxygen therapy (RICH-ART): a randomized, controlled, phase 2-3 trial // Lancet Oncol. 2019. Vol. 20, N 11. P.1602-1614. doi: 10.1016/S1470-2045(19)30494-2.

3. Lee A.Y., Golden D.W., Bazan J.G. et al. Hematologic nadirs during chemoradiation for anal cancer: temporal characterization and dosimetric predictors // Int. J. Radiation Oncol. Biol. Phys. 2017. Vol. 97, N 2. P. 306-312. doi: 10.1016/j.ijrobp.2016.10.010.

4. Mohamed N.E., Ashour S.E. Role of ethanolic extract of Morus alba leaves on some biochemical and haematological alterations in irradiated male rats // Int. J. Radiat. Biol. 2018. Vol. 94, N 4. P.374-384. doi: 10.1080/09553002.2018.1433888.

5. Snyder M.W., Kircher M., Hill A.J. et al. Cell-free DNA comprises an in vivo nucleosome footprint that informs its tissues-of-origin // Cell. 2016. Vol. 164, ? 1-2. P. 57-68. doi: 10.1016/j.cell.2015.11.050.

6. Vladimirov V.G., Belokhvostov A.S., Sherlina S.S. et al. Extracellular DNA level in the blood of irradiated rats // Int. J. Radiat. Biol. 1992. Vol. 62, ? 6. P.667-671. doi: 10.1080/09553009214552611

7. Vasilyeva I.N. Low-molecular-weight DNA in blood plasma as an index of the influence of ionizing radiation // Ann. NY Acad. Sci. 2001. Vol. 945. P.221-228. doi: 10.1111/j.1749-6632.2001.tb03889.x

8. Vasilyeva I., Bespalov V., Baranova A. Radioprotective combination of α-tocopherol and ascorbic acid promotes apoptosis that is evident by release of low-molecular weight DNA fragments into circulation // Int. J. Radiat. Biol. 2015. Vol. 91, N 11. P.872-877. doi: 10.3109/09553002.2015.1087066.

9. Ashry O.M., Hussein E.M., Abd El-Azime A.SH. Restorative role of persimmon leaf (Diospyros kaki) to gamma irradiation induced oxidative stress and tissue injury in rats / Int. J. Radiat. Biol. 2017. Vol. 93, N 3. P. 324-329. doi: 10.1080/09553002.2016.1254831.

10. Liu J., Au Yeng Sh.L., Kwok M.K. et al. The effect of liver enzyme on bone composition: a mendelian randomization study / PLoS ONE. 2020. Vol. 15, N 2. 18 р. doi: 10.1371/journal.pone.0228737.

11. Lenarczyk M., Kronenberg A., Mader M. et al. Age of exposure to radiatiation determined severity of renal and cardiac disease in rats / Radiat. Res. 2019. Vol. 192, N1. P. 63-67. doi: 10.1667/RR15043.

12. Vasilyeva I.N., Bespalov V.G., Von J.D. et al. Cell-free DNA plasma levels differ in age-specific pattern in healthy rats and castrated with testosterone-induced benign prostatic hyperplasia / Int. J. Genomics. 2019. 6 р. doi: 10.1155/2019/8173630.

13. Brengues M., Lapierre A., Bourgier C. et al. T lymphocytes to predict radiation-induced late effects in normal tissues / Expert Rev Mol Diagn. 2017. Vol.17, N 2. P.119-127. doi: 10.1080/14737159.2017.1271715.

14. Holdenrieder S., Stiber P. Clinical use of circulating nucleosomes / Crit. Rev. Clin. Lab. Sci. 2009. Vol. 46, N 1. P.1-24. doi: 10.1080/10408360802485875.

15. Holdenrieder S. Liquid Profiling of Circulating Nucleic Acids as a Novel Tool for the Management of Cancer Patients / Advances in Experimental Medicine and Biology. 2016. Vol. 924. P.53-60. doi: 10.1007/978-3-319-42044-8_11.

16. Ermakov A.V., Konkova M.S., Kostyuk S.V. et al. Oxidized extracellular DNA as a stress signal in human cells / Oxid. Med. Cell. Longev. 2013. doi: 10.1155/2013/649747.

17. Kostyuk S.V., Ermakov A.V., Alekseeva A.Yu. et al. Role of extracellular DNA oxidative modification in radiation induced bystander effects in human endotheliocytes / Mut. Res. 2012. Vol. 729, N 1-2. P. 52-60. doi: 10.16/j.mrfmmm.2011.09.005.

18. Ko S.H., Lee J.K., Lee H.J. et al. 8-Oxo-2'-deoxyguanosine ameliorates features of metabolic syndrome in obese mice / Biochem. Biophys. Res. Commun. 2014. Vol. 443, N 2. P. 610-616. doi: 10.1016/j.bbrc.2013.12.018.

19. Huh J.Y., Son D.J., Lee Y. et al. 8-Hydroxy-2-deoxyguanosine prevents plaque formation and inhibits vascular smooth muscle cell activation through Rac1 inactivation / Free Radic. Biol. Med. 2012. Vol. 53, N 1. P.109-121. doi: 10.1016/j.freeradbiomed.2012.03.023.

20. Teng M.-Sh., Wu S., Hsu L.A. et al. Pleiotropic association of LIPS variants with lipid and urinary 8-hydroxy deoxyguanosine levels in a Taivanese populations / Lipids Health Dis. 2019. Vol. 18, N 1. P.111. doi: 10.1186/s12944-019-1057-9.