Медико-биологический
информационный портал
для специалистов
 
БИОМЕДИЦИНСКИЙ ЖУРНАЛ Medline.ru

СОДЕРЖАНИЕ ЖУРНАЛА:
Физико-химическая биология

Клиническая медицина

Профилактическая медицина

Медико-биологические науки


АРХИВ:

Фундаментальные исследования

Организация здравохраниения

История медицины и биологии



Последние публикации

Поиск публикаций

Articles

Архив :  2000 г.  2001 г.  2002 г. 
               2003 г.  2004 г.  2005 г. 
               2006 г.  2007 г.  2008 г. 
               2009 г.  2010 г.  2011 г. 
               2012 г.  2013 г.  2014 г. 
               2015 г.  2016 г.  2017 г. 

Редакционная информация:
        Опубликовать статью
        Наша статистика


 РЕДАКЦИЯ:
Главный редактор

Заместители главного редактора

Члены редколлегии
Специализированные редколлегии


 УЧРЕДИТЕЛИ:
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки
"Институт токсикологии Федерального медико-биологического агентства"
(ФГБУН ИТ ФМБА России)

Институт теоретической и экспериментальной биофизики Российской академии наук.

ООО "ИЦ КОМКОН".




Адрес редакции и реквизиты

199406, Санкт-Петербург, ул.Гаванская, д. 49, корп.2

ISSN 1999-6314

Российская поисковая система
Искать: 


«
ТОМ 12, СТ. 101 (стр. 1235-1247)   |   25 ноября 2011 г.   
»

Клиническая медицина » Хирургия » Трансфузиология

Размораживание и отмывка стволовых клеток пуповинной крови- спорные моменты и собственный опыт.
Селиванов Е.А1., Смолянинов А.Б.2,3, Иволгин Д.А.2,3, Коровина К.В.3, Хрупина А.С.2,3

1-ФГУ РосНИИГТ ФМБА РФ- Санкт-Петербург, Россия, 2-я Советская ул., 8, (812) 274-56-38, bloodscience@mail.ru
2- НИИ Клеточных Технологий СПбМАПО ФАЗСР- Санкт-Петербург, Россия,
199106, Большой пр. В.О., 85, (812) 777-02-06, stemcellbank@inbox.ru
3- Покровский Банк Стволовых Клеток- Санкт-Петербург, Россия,



Резюме

Сегодня не существует унифицированных протоколов для замораживания, размораживания и подготовки к трансплантации стволовых клеток ПК. Мы исследовали 31 образец концентрата лейкоцитарной фракции ПК- 11 размороженных образцов обрабатывали аппаратным методом на Sepax S100 (Biosafe, Швейцария) (группа 1), а 11 образцов обрабатывали ручным методом на центрифуге (группа 2), 9 образцов без отмывки от ДМСО составили группу сравнения (группа 3). Во всех образцах определялось количество ядерных клеток, количество и жизнеспособность CD34+/CD45+ клеток в концентрате лейкоцитарной фракции до замораживания, после размораживания и отмывки клеток от криопротектора двумя способами: на аппарате Sepax S-100 и ручным методом на центрифуге. Медиана выхода CD34/45+ в группе 1, 2 и 3 составила 92±9%, 81±7% и 94±6%, соответственно, медиана выхода ядерных клеток в группах 1, 2 и 3 составила 93±3%, 85±4% и 94±3%, соответственно, жизнеспособность клеток после размораживания в группах 1, 2, 3 составила 94,9±2,4%, 93,7±2,2% и 94,4±2,1% соответственно. Из полученных результатов можно сделать вывод о том, что способ размораживания и последующей обработки образца ПК не влияет на показатели жизнеспособности CD34/45+ клеток, а наибольший процент потери ядерных и CD34/45+ клеток (15% и 19%, соответственно) наблюдается в группе 2, в то время как показатели клеточного концентрата, в группах 1 и 3 существенно не различались. Таким образом, при наличии соответствующего технического оснащения, отмывка концентрата стволовых клеток пуповинной крови от криопротектора с помощью автоматической системы не ведет к ухудшению качественных показателей образца ПК.


Ключевые слова

криоконсервация, пуповинная кровь, стволовые клетки, ДМСО, Sepax S-100





(статья в формате PDF. Для просмотра необходим Adobe Acrobat Reader)



открыть статью в новом окне

Список литературы

1 Broxmeyer H.E. Cord Blood Transplantation: A Mini Review Celebrating the 20th Anniversary of the First Cord Blood Transplant // The Hematologist.-2009.-№ 6(1).-P.7.


2 Broxmeyer H.E., Smith FO. Cord Blood Hematopoietic Cell Transplantation // Appelbaum F.R., Forman S.J., Negrin R.S., Blume K.G.. Thomas’ Hematopoietic Cell Transplantation- 4th edn. - Wiley-Blackwell, West Sussex, United Kingdom, - 2009.- Section 4,- Ch. 3,- P. 559–576.


3 Gluckman E., Broxmeyer H.E., Auerbach A.D., et al. Hematopoietic reconstitution in a patient with Fanconi anemia by means of umbilical-cord blood from an HLA-identical sibling // N Engl J Med.-1989.- № 321(17).- P.1174–1178.


4 Broxmeyer H.E., Douglas G.W., Hangoc G, Cooper S, Bard J, English D et al. Human umbilical cord blood as a potential source of transplantable hematopoietic stem/progenitor cells // Proc Natl Acad Sci USA.- 1989.- № 86(10).- P. 3828–3832.


5 Suzanne M.W., Austin E., Armitage S., Cryopreservation of Hematopoietic Stem/Progenitor Cells for Therapeutic Use // Day J.G., Stacey G.N.. Cryopreservation and freeze-drying protocols - 2nd edn.- Humana Press Inc. Totowa, New Jersey,- 2007.- Ch. 17,- P. 237-259


6 Hubel A. et al., Cryopreservation of cord blood after liquid storage // Cytotherapy.- 2003,- № 5(5).- P.370-376.


7 Hubel A. et al., Liquid storage, shipment, and cryopreservation of cord blood // Transfusion.- 2004.- № 44(4).- P. 518-525.


8 Shlebak A.A. et al., Optimal timing for processing and cryopreservation of umbilical cord haematopoietic stem cells for clinical transplantation // Bone Marrow Transplantation.- 1999.- № 23(2).- P.131–136


9. Lovelock, J.E., Bishop M.W.H.. Prevention of freezing damage to living cells by dimethyl sulphoxide // Nature.- 1959.- № 183(4672).- P.1394–1395.


10. Hunt C.J., Armitage S.E., Pegg D.E.. Cryopreservation of umbilical cord blood: 2. Tolerance of CD34(+) cells to multimolar dimethyl sulphoxide and the effect of cooling rate on recovery after freezing and thawing // Cryobiology.- 2003.- № 46(1).-P.76–87.


11. Hunt C.J., Armitage S.E., Pegg D.E.. Cryopreservation of umbilical cord blood: 2. Tolerance of CD34(+) cells to multimolar dimethyl sulphoxide and the effect of cooling rate on recovery after freezing and thawing // Cryobiology.- 2003.- № 46(1).-P. 61–75.


12 Chaloupka J.C., Vinuela F., Vinters H.V. et al. 1.Technical feasibility and histopathologicstudies of ethylene vinyl copolymer (EVAL) using a swine endovascular embolization model // Am J Neuroradiol.- 1994.- № 15(6).- P.1107–1115. Chaloupka J.C., Huddle D.C., Alderman J. et al. 2. A reexamination of the angiotoxicity of superselective injection of DMSO in the swine rete embolization model // Am J Neuroradiol.- 1999.- № 20(3).- P. 401–410.


13 Zambelli A., Poggi G., Da Prada G. et al.. Clinical toxicity of cryopreserved circulating progenitor cells infusion // Anticancer Res.- 1998.- № 18(6B).- P. 4705–4708.


14 Davis J.M., Rowley S.D., Braine H.G. et al.. Clinical toxicity of cryopreserved bone marrow graft infusion // Blood.- 1990.- № 75(3).- P. 781–786.


15 Zenhausern R., Tobler A., Leoncini L. et al.. Fatal cardiac arrhythmia after infusion of dimethyl sulfoxide-cryopreserved hematopoieticstem cells in a patient with severe primary cardiac amyloidosis and end-stage renal failure // Ann Hematol.- 2000.- № 79(9).- P. 523–526.


16 Benekli M., Anderson B., Wentling D. et al.. Severe respiratory depression after dimethyl sulphoxide-containing autologous stem cell infusion in a patient with AL amyloidosis // Bone Marrow Transplant.- 2000.- № 25(12).- P.1299–1301.


17 Miniero R., Vai S., Giacchino M. et al.. Severe respiratory depression after autologous bone marrow infusion // Haematologica.- 1992.- № 77(1).- P. 98–99.


18 Corso S., Vukelja S.J., Wiener D. et al. Diffuse alveolar hemorrhage following autologous bone marrow infusion // Bone Marrow Transplant.- 1993.- № 12(3).- P. 301–303.


19 Higman M.A., Port J.D., Beauchamp Jr N.J. et al. Reversible leukoencephalopathy associated with re-infusion of DMSO preserved stem cells // Bone Marrow Transplant.- 2000.- № 26(7).- P. 797–800.


20 Ferrucci P.F., Martinoni A., Cocorocchio E. et al. Evaluation of acute toxicities associated with autologous peripheral blood progenitor cell reinfusion in patients undergoing high-dose chemotherapy // Bone Marrow Transplant.- 2000.- № 25(2).- P.173–177.


21 Hequet O., Dumontet C., El Jaafari-Corbin A. et al. Epileptic seizures after autologous peripheral blood progenitor infusion in a patient treated with high-dose chemotherapy for myeloma // Bone Marrow Transplant.- 2002.- № 29(6).- P. 544.


22 Windrum P., Morris T.C.. Severe neurotoxicity because of dimethyl sulphoxide following peripheral blood stem cell transplantation // Bone Marrow Transplant.- 2003.- № 31(4).- P. 315.


23 Hoyt R., Szer J., Grigg A.. Neurological events associated with the infusion of cryopreserved bone marrow and/or peripheral blood progenitor cells // Bone Marrow Transplant.- 2000.- № 25(12).- P.1285–1287.


24 Gomez S., Nagler A., Naparstek E., Slavin S.. Transient elevation of serum lactic dehydrogenase following autologous bone marrow transplantation // Bone Marrow Transplant.- 1991.- № 7(6).- P. 487–488.


25 Burger J., Gilmore M.J., Jackson B. et al. Acute haemoglobinaemia associated with the reinfusion of bone marrow buffy coat for autologous bone marrow transplantation // Bone Marrow Transplant.- 1991.- № 7(4).- P. 322–324.


26 Galmes A., Besalduch J., Bargay J. et al. Long-term storage at -80 degrees C of hematopoietic progenitor cells with 5-percent dimethyl sulfoxide as the sole cryoprotectant // Transfusion.- 1999.- № 39(1).- P. 70–73.


27 Bakken A.M., Bruserud O., Abrahamsen J.F.. No differences in colony formation of peripheral blood stem cells frozen with 5 or 10% dimethyl sulfoxide // J Hematother Stem Cell Res.- 2003.- № 12(3).- P. 351–358.


28 Halle P., Tournilhac O., Knopinska-Posluszny W. et al.. Uncontrolled-rate freezing and storage at -80 degrees C, with only 3.5-percent DMSO in cryoprotective solution for 109 autologous peripheral blood progenitor cell transplantations // Transfusion.- 2001.- № 41(5).- P. 579–580.


29 Syme R., Bewick M., Stewart D. et al. The role of depletion of dimethyl sulfoxide before autografting: on hematologic recovery, side effects, and toxicity // Biol Blood Marrow Transplant.- 2004.- № 10(2).- P.135–141.


30 Martino M., Morabito F., Messina G. et al.. Fractionated infusions of cryopreserved stem cells may prevent DMSO-induced major cardiac complications in graft recipients // Haematologica.- 1996.- № 81(1).- P. 59–61.


31 Windrum P. et al.. Variation in dimethyl sulfoxide use in stem cell transplantation: a survey of EBMT centres // Bone Marrow Transplantation.- 2005.- № 36(7).- P. 601–603


32 Rubinstein P. et al.. Processing and cryopreservation of placental/umbilical cord blood for unrelated bone marrow reconstitution // Proc. Nati. Acad. Sci. USA.- 1995.- № 92(22).- P. 10119-10122.


33 Meyer T.P. et al.. Analysis and cryopreservation of hematopoietic stem and progenitor cells from umbilical cord blood // Cytotherapy.- 2006.- 8(3).- P. 265-276.


34 Laroche V. et al.. Cell loss and recovery in umbilical cord blood processing: a comparison of postthaw and postwash samples // Transfusion.- 2005.- № 45(12).- P. 1909-1916.


35 Syme R. et al. The Role of Depletion of Dimethyl Sulfoxide before Autografting: On Hematologic Recovery, Side Effects, and Toxicity // Biology of Blood and Marrow Transplantation.- 2004.- № 10(2).- P.135-141.


36 Yang H., Zhao H., Acker J. P., Liu J.Z., Akabutu J., McGann L.E.. Effect of dimethyl sulfoxide on post-thaw viability assessment of CD45+ and CD34+ cells of umbilical cord blood and mobilized peripheral blood // Cryobiology.- 2005.- № 51(2).- P. 165–175.


37 Nagamura-Inoue T. et al.. Wash-out of DMSO does not improve the speed of engraftment of cord blood transplantation: follow-up of 46 adult patients with units shipped from a single cord blood bank // Transfusion.- 2003.- № 43(9).- P.1285–1295.


38 Hahn T. et al.. Use of nonvolume-reduced (unmanipulated after thawing) umbilical cord blood stem cells for allogeneic transplantation results in safe engraftment // Bone Marrow Transplantation.- 2003.- № 32(2).- P. 145–150.


39 Rodríguez L. et al.. Washing of cord blood grafts after thawing: high cell recovery using an automated and closed system // Vox Sang.- 2004.- № 87(3).- P.165-72.


40 Spurr E.E. et al.. Cryopreserved human haematopoietic stem cells retain engraftment potential after extended (5–14 years) cryostorage // Cryobiology.- 2002.- № 44(3).- P. 210-217


41 Mugishima H. et al.. Effects of long-term cryopreservation on hematopoietic progenitor cells in umbilical cord blood // Bone Marrow Transplantation.- 1999.- № 23(4).- P. 395–396.


42 Broxmeyer H.E.. High-efficiency recovery of functional hematopoietic progenitor and stem cells from human cord blood cryopreserved for 15 years // Proc. Nati. Acad. Sci. USA.- 2003.- № 100(2).- P. 645-650.


43 Broxmeyer H.E.. Experimental basis of cord blood transplantation // Bone Marrow Transplantation.- 2009.- № 44(10).- P. 627–633.


44 Scaradavou A. et al.. "Age" of the Cord Blood (CB) Unit: Impact of Long-Term Cryopreservation and Storage on Transplant Outcome// Blood (ASH Annual Meeting Abstracts).- 2007.- № 110(11).- Abstract 2033.


45 Chow R. et al. The Effect of Storage Time on Clinical Outcomes of Plasma Depleted (PD) Cord Blood (CB) Transplantation // Blood (ASH Annual Meeting Abstracts).- 2008.- № 112(11).- Abstract 4128.



Свидетельство о регистрации сетевого электронного научного издания N 077 от 29.11.2006
Журнал основан 16 ноября 2000г.
Выдано Министерством РФ по делам печати, телерадиовещания и средств массовых коммуникаций
(c) Перепечатка материалов сайта Medline.Ru возможна только с письменного разрешения редакции

Размещение рекламы

Rambler's Top100